一、引言
microeco包是福建农林大学姚敏杰教授团队开发的扩增子测序集成分析。该包综合了扩增子测序下游分析的多种功能包括群落组成、多样性、网络分析、零模型等等。通过简单的几行代码可实现复杂的分析。因此，microeco包发表以来被学界广泛关注，截止2024年10月13日已经被引644次，是领域内高被引文章。本系列推送将持续推出microeco包分析流程，这一期是微生物网络分析（network）。
在微生物群落生态学研究中，微生物群落之间的相互作用是揭示微生物生态系统复杂性的关键。微生物之间的协作、竞争等关系构成了一个复杂的生态网络，通过这些网络，我们能够深入理解微生物如何在生态系统中相互影响、协同工作甚至争夺资源。网络分析的方法多种多样，如下阐述了选择microeco进行网络分析的理由。
1.1 为什么选择 microeco 进行网络分析？
高效、简便的网络构建：仅需几行代码便可完成复杂的网络构建。
支持多种相关性算法：根据研究需求，选择不同的相关性测量方式。
强大的可视化功能：与ggplot2、igraph无缝集成，生成美观且信息丰富的网络图。
拓展功能丰富：不仅可以构建网络，还可以进行模块性、中心性等分析，深度挖掘微生物间的相互作用。
如下所示阐述了microeco包中进行微生物网络构建和分析的流程。比较核心的内容是输入文件的准备，也就是微表（mirotable），microeco包进行多种分析的前提也是准备好基础数据，包括样本信息表：sample_info，特征表otu_table,分类信息表taxonomy_table,系统发育树phylo_tree和环境因子表env_data。当然不同的分析所需要的基础数据也不一样，系统发育树和环境因子表并不是所有分析都需要的。微表准备好了可以通过几行简单的代码进行下游分析。
二、文献美图欣赏
图源：Yuan, M.M., Guo, X., Wu, L. et al.Nat. Clim. Chang. 11, 343–348 (2021).
图片来源：Dai, T., Wen, D., Bates, C.T. et al. Nat Commun 13, 175 (2022).
三、示例数据和R代码
这套代码基于microeco包自带的数据进行分析，同时我们也提供了读取自己数据的方法，可私信小编获取代码。
🌟数据基本操作之建立微表
#安装microeco包
if(!require("microeco")){install.packages("microeco")}
library(microeco)
#安装并加载ape包
if(!require("ape")){install.packages("ape")}
library(ape)
##################数据基本操作#######################
# 样本信息表；data.frame
data(sample_info_16S)
# 特征表；data.frame
data(otu_table_16S)
# 分类分配表；data.frame
data(taxonomy_table_16S)
# 系统发育树；不是必需的；用于系统发育分析
# Newick格式；使用ape包的read.tree函数读取树文件
data(phylo_tree_16S)
# 加载环境数据表（如果它不在样本表中）
data(env_data_16S)
# 使用magrittr包中的管道操作符
if(!require("magrittr")){install.packages("mgrittr")}
library(magrittr)
# 固定随机数生成，以使结果可重复
set.seed(123)
# 使绘图背景与教程相同
if(!require("ggplot2")){install.packages("ggplot2")}
library(ggplot2)
theme_set(theme_bw())
# 统一分类信息，自动统一分类前缀
taxonomy_table_16S %<>% tidy_taxonomy
# 在R6类中，'$new' 是用于创建类的新对象的原始方法
# 如果你只提供丰度表，该类可以帮助你创建一个样本信息表
mt <- microtable$new(otu_table = otu_table_16S)
# 通常情况下添加元数据
mt <- microtable$new(otu_table = otu_table_16S, sample_table = sample_info_16S)
mt
# 让我们创建一个包含更多信息的 microtable 对象
mt <- microtable$new(sample_table = sample_info_16S, otu_table = otu_table_16S, tax_table = taxonomy_table_16S, phylo_tree = phylo_tree_16S)
🌟数据清洗
#删除非细菌和古菌的OTU
# 使用 R 的 subset 函数过滤 tax_table 中的分类单元
mt$tax_table %<>% base::subset(Kingdom == "k__Archaea" | Kingdom == "k__Bacteria")
mt
# 使用 grepl 函数的另一种方式
#mt$tax_table %<>% .[grepl("Bacteria|Archaea", .$Kingdom), ]
#删除线粒体或叶绿体OTU
# 这将删除 tax_table 中包含这些词的行，忽略分类级别并忽略大小写。
# 因此，如果你想过滤不被认为是污染的某些分类单元，请像之前那样使用 subset 来过滤 tax_table。
mt$filter_pollution(taxa = c("mitochondria", "chloroplast"))
#使所有文件中OTU和样本信息一致，使用tidy_dataset修剪函数
mt$tidy_dataset()
mt
#使用 sample_sums() 来检查每个样本中的序列号
mt$sample_sums() %>% range
#样本稀疏化，每个样本的序列数标准化为相同的数量
mt$rarefy_samples(sample.size = 10000)
mt
#save_table可以将微表对象中的所有基础数据保存到本地文件中，包括特征丰度、元数据、分类表、系统发育树和代表序列
mt$save_table(dirpath = "basic_files", sep = ",")
🌟microeco网络分析，构建网络并输出Gephi数据进行网络绘图
##################microeco网络分析###################
#计算相关性矩阵
#使用WGCNA包进行计算，该包提升了计算效率，适合大规模数据
#加载并安装WGCNA包
if(!require("WGCNA")) install.packages("WGCNA", repos = BiocManager::repositories())
#使用WGCNA进行相关性矩阵计算
t1 <- trans_network$new(
dataset = mt, # 输入数据集 mt
cor_method = "spearman", # 选择 Spearman 相关性计算方法
use_WGCNA_pearson_spearman = TRUE, # 使用 WGCNA 包来计算相关性
filter_thres = 0.0001 # 设置过滤阈值为 0.0001
)
# 构建相关性网络
#安装并加载igraph包
if(!require("igraph")){install.packages("igraph")}
# 使用 p 值阈值和网络优化进行网络构建
#t1$cal_network(
# COR_p_thres = 0.01, # 设定相关性 p 值的阈值，只有 p 值小于 0.01 的相关性才会用于构建网络
# COR_optimization = TRUE # 启用网络优化，使用算法构建更稀疏的网络，提高网络可解释性
#)
# 使用自定义的相关系数阈值来构建网络(可选)
t1$cal_network(
COR_p_thres = 0.01, # 设定相关性 p 值的阈值，过滤掉不显著的相关性
COR_cut = 0.7 # 使用相关系数阈值 0.7，只有相关系数大于 0.7 的变量对会被保留在网络中
)
# 对无向网络应用 igraph 的 cluster_fast_greedy 函数进行模块划分
t1$cal_module(method = "cluster_fast_greedy") # 调用模块划分方法
#将网络保存为gexf文件，该文件可直接用于Gephi软件进行可视化
#安装并加载rgexf包,xfun包兼容问题，建议先安装xfun
install.packages("xfun")
if(!require(rgexf)){install.packages('rgexf')}
#保存网络
t1$save_network(filepath = "network.gexf")
# 计算网络属性
t1$cal_network_attr()
t1$res_network_attr
#函数get_node_table、get_edge_table和get_adjacency_matrix分别用于从网络获取节点属性表、边属性表和邻接矩阵。
# 获得节点属性
t1$get_node_table(node_roles = TRUE)
# 获得边属性表
t1$get_edge_table()
# 获得邻接矩阵
t1$get_adjacency_matrix()
#输出节点和边数据文件，可用于cytoscope软件绘制网络图
write.csv(t1$res_edge_table,"res_edge_table.csv")
write.csv(t1$res_node_table,"res_node_table.csv")
🌟Gephi绘图结果
🌟microeco直接绘图和zi-pi分析，鉴别关键物种
#绘制网络图
t1$plot_network(method = "ggraph", node_color = "module",node_label = NA)
#可选其他的绘图方式
#t1$plot_network(method = "networkD3", node_color = "module")
#t1$plot_network(method = "igraph")
#模块内连接和模块间连接绘制节点分类
#add_label = TRUE 可以用于直接为点添加文本标签
t1$plot_taxa_roles(use_type = 1)
# plot node roles with phylum information
t1$plot_taxa_roles(use_type = 2)
🌟提取网络绘制子网络图
从网络中提取出来的一个部分，用于聚焦特定物种群或相互作用的分析。比如分类层级、功能属性
#提取子网络
#提取特定模块的子网络
#t1$subset_network(node = t1$res_node_table %>% base::subset(module == "M1") %>% rownames, rm_single = TRUE)
#提取特定类型边的子网络(正相关)
#t1$subset_network(edge = "+")
#实例
# 提取样本 'S1' 的子网络
sub1 <- t1$subset_network(node = mt$otu_table %>% .[.[, "S1"] != 0, ] %>% rownames, rm_single = TRUE)
# 通过直接赋值创建 t2 对象
t2 <- t1
t2$res_network <- sub1 # 将提取的 'S1' 子网络赋值给 t2 的网络属性
# 现在 t2 包含 'S1' 的网络，可以用于进一步分析
t2$cal_module() # 计算 t2 网络的模块
t2$save_network("S1.gexf") # 保存 'S1' 的网络为 .gexf 格式文件
#绘制子网络图
t1$plot_network(method = "ggraph", node_color = "module",node_label = NA)
#对于微生物网络图的绘制多种方法，可以综合其他方法的选择进行选取
四、参考文献
[1] Chi Liu, Yaoming Cui, Xiangzhen Li, Minjie Yao, microeco: an R package for data mining in microbial community ecology, FEMS Microbiology Ecology, Volume 97, Issue 2, February 2021, fiaa255
[2] Dai, T., Wen, D., Bates, C.T. et al. Nutrient supply controls the linkage between species abundance and ecological interactions in marine bacterial communities. Nat Commun 13, 175 (2022).
[3] Yuan, M.M., Guo, X., Wu, L. et al. Climate warming enhances microbial network complexity and stability. Nat. Clim. Chang. 11, 343–348 (2021).
五、相关信息
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📌示例代码中提供了数据和代码，小编已经测试，可直接运行。
以上就是本节所有内容。
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